MECANISMOS FISIOLÓGICOS DA REGENERAÇÃO ÓSSEA GUIADA
Uma Revisão de Literatura
DOI:
https://doi.org/10.36557/2674-8169.2026v8n6p411-424Palavras-chave:
Biomateriais, Regeneração Óssea, Enxerto Ósseo, ImplantodontiaResumo
A regeneração óssea guiada (ROG) tem se destacado como uma técnica essencial na implantodontia moderna, especialmente diante das alterações ósseas decorrentes das exodontias. Após a extração dentária, o alvéolo sofre mudanças quantitativas e qualitativas, como reabsorção da crista óssea e cicatrização irregular, comprometendo a instalação e estabilidade de implantes dentários. Nesse contexto, a utilização de biomateriais e membranas de barreira tornou-se fundamental para favorecer a neoformação óssea e preservar as estruturas alveolares.
A ROG baseia-se no uso de barreiras físicas capazes de impedir a invasão de células não osteogênicas, permitindo que células osteoprogenitoras repovoem o sítio regenerativo. Os mecanismos biológicos envolvidos incluem osteogênese, osteoindução e osteocondução, fundamentais para o sucesso da regeneração óssea. Entre os biomateriais mais utilizados destacam-se os enxertos autógenos, alógenos, xenógenos e aloplásticos, cada qual apresentando propriedades específicas relacionadas à sua origem e composição. O enxerto autógeno permanece como padrão ouro devido ao seu elevado potencial regenerativo, embora os enxertos xenógenos também apresentem resultados clínicos satisfatórios.
Além dos enxertos ósseos, as membranas absorvíveis e não absorvíveis desempenham papel indispensável na manutenção do espaço regenerativo e na proteção do coágulo sanguíneo. Para a realização deste estudo, foi conduzida uma revisão bibliográfica nas bases PubMed, SciELO e Google Acadêmico, incluindo revisões de literatura, ensaios clínicos, meta-análises e estudos experimentais relacionados à ROG e aos biomateriais utilizados na implantodontia.
Conclui-se que a regeneração óssea guiada representa uma abordagem eficaz, previsível e amplamente consolidada na reconstrução de defeitos ósseos alveolares. Os avanços tecnológicos dos biomateriais e das membranas têm contribuído significativamente para melhores resultados clínicos, maior estabilidade tecidual e longevidade dos implantes dentários, tornando indispensável o domínio dessa técnica pelos cirurgiões-dentistas.
Downloads
Referências
Battistella MA, Dal Paz J, Zeferino N. Regeneração óssea guiada: uma revisão de literatura. J Multidiscipl Dent. 2023 Jan-Apr;13(1):25-9.
Kim JJ, Bem Amara H, Chung I, Koo KT. Compromised extraction sockets: a new classification and prevalence involving both soft and hard tissue loss. J Periodontal Implant Sci. 2021;51(2):100-113. doi:10.5051/jpis.2005120256.
Tan WL, Wong TL, Wong MC, Lang NP. A systematic review of post-extractional alveolar hard and soft tissue dimensional changes in humans. Clin Oral Implants Res. 2012 Feb;23 Suppl 5:1-21. doi:10.1111/j.1600-0501.2011.02375.x.
Sykes LM, Bradfield C, Naidu K. Alveolar bone resorption following tooth extraction characteristically illustrated. S Afr Dent J. 2021 Oct;76(9):545-549. doi:10.17159/2519-0105/2021/v76no9a5.
Anjos L, Oliveira AR, Santos R, Meneses N, Lima T, Barbosa L, Simões M, Zendron M, Filho W, Paixão S, et al. O que há de atual sobre regeneração óssea guiada em odontologia: uma revisão integrativa. Rev Eletrônica Acervo Saúde. 2022;15:e10096. doi:10.25248/reas.e10096.2022.
Botticelli D, Berglundh T, Lindhe J. Hard-tissue alterations following immediate implant placement in extraction sites. J Clin Periodontol. 2004;31:820-828. doi:10.1111/j.1600-051X.2004.00565.x.
Paula TCS, Fernandes ACS. Uso de membranas de barreira para regeneração óssea guiada na implantodontia. Rev Odontol UNESP. 2021;50:79-80.
De Lima FF, Uzai M, De Souza NN, Pimentel SP, Cirano FR, Machado RMM, et al. Efeito de uma membrana bioativa sobre a regeneração óssea guiada de defeitos críticos de calvária. Rev Odontol UNESP. 2024;53:e20240033. doi:10.1590/1807-2577.03324.
Altıparmak N, Akdeniz SS, Akçay EY, Bayram B, Araz K. Effect of induced membrane on guided bone regeneration in an experimental calvarial model. J Craniofac Surg. 2020 May-Jun;31(3):879-883. doi:10.1097/SCS.0000000000006154.
Dahlin C, Linde A, Gottlow J, et al. Healing of bone defects by guided tissue regeneration. Plast Reconstr Surg. 1988;81:672-676. doi:10.1097/00006534-198805000-00004.
Retzepi M, Donos N. Guided bone regeneration: biological principle and therapeutic applications. Clin Oral Implants Res. 2010;21:567-576.
Misch CE, Dietsh F. Bone-grafting materials in implant dentistry. Implant Dent. 1993;2:158-167. doi:10.1097/00008505-199309000-00003.
Liu J, Kerns DG. Mechanisms of guided bone regeneration: a review. Open Dent J. 2014;8:56-65. doi:10.2174/1874210601408010056.
Scarano A, Piattelli A, Perrotti V, Manzon L, Iezzi G. Maxillary sinus augmentation in humans using cortical porcine bone: a histological and histomorphometrical evaluation after 4 and 6 months. Clin Implant Dent Relat Res. 2011;13:13-18.
Elgali I, Omar O, Dahlin C, Thomsen P. Guided bone regeneration: materials and biological mechanisms revisited. Eur J Oral Sci. 2017;125(5):315-337. doi:10.1111/eos.12364.
Bartee BK. Extraction site reconstruction for alveolar ridge preservation. Part 1: rationale and materials selection. J Oral Implantol. 2001;27:187-193. doi:10.1563/1548-1336(2001)027<0187:ESRFAR>2.3.CO;2.
Schenk RK, Buser D, Hardwick WR, et al. Healing pattern of bone regeneration in membrane-protected defects: a histologic study in the canine mandible. Int J Oral Maxillofac Implants. 1994;9:13-29.
Buser D, editor. 20 years of guided bone regeneration in implant dentistry. 2nd ed. Chicago: Quintessence Publishing Co.; 2009.
Misch CM. Comparison of intraoral donor sites for onlay grafting prior to implant placement. Int J Oral Maxillofac Implants. 1997;12:767-776.
Garg AK, Morales MJ, Navarro I, Duarte F. Autogenous mandibular bone grafts in the treatment of the resorbed maxillary anterior alveolar ridge: rationale and approach. Implant Dent. 1998;7:169-176.
Triplett RG, Schow SR. Autologous bone grafts and endosseous implants: complementary techniques. J Oral Maxillofac Surg. 1996;54:486-494.
Montazem A, Valauri DV, St-Hilaire H, Buchbinder D. The mandibular symphysis as a donor site in maxillofacial bone grafting: a quantitative anatomic study. J Oral Maxillofac Surg. 2000;58:1368-1371.
Friedlaender GE, Horowitz MC. Immune responses to osteochondral allografts: nature and significance. Orthopedics. 1992 Oct;15(10):1171-1175.
Lutz R, Berger-Fink S, Tockmann P, Neukam FW, Schlegel KA. Sinus floor augmentation with autogenous bone versus a bovine-derived xenograft: a 5-year retrospective study. Clin Oral Implants Res. 2015;26(6):644-648.
Figueiredo A, Silva O, Cabrita S. Inflammatory reaction post implantation of bone graft materials. Exp Pathol Health Sci. 2012;6(1):15-18.
Whang PG, Wang JC. Bone graft substitutes for spinal fusion. Spine J. 2003 Mar-Apr;3(2):155-165.
Kim Y, Nowzari H, Rich SK. Risk of prion disease transmission through bovine-derived bone substitutes: a systematic review. Clin Implant Dent Relat Res. 2013;15(5):645-653.
Aroeira P. Utilização do enxerto de tecido conjuntivo subepitelial na implantodontia [monografia]. Rio de Janeiro: Academia de Odontologia do Rio de Janeiro; 2007.
Caffesse RG, Mota LF, Quinones CR, Morrison EC. Clinical comparison of resorbable and non-resorbable barriers for guided periodontal tissue regeneration. J Clin Periodontol. 1997 Oct;24(10):747-752.
Hoornaert A, D’Arros C, Heymann MF, Layrolle P. Biocompatibility, resorption and biofunctionality of a new synthetic biodegradable membrane for guided bone regeneration. Biomed Mater. 2016;11(1):1-12.
Almeida J. Aumento de gengiva queratinizada em mucosa peri-implantar. Rev Odontol UNESP. 2012;41(5):365-369.
Amantini G. Estudo clínico comparativo entre enxertos gengivais livres convencionais (EGL), enxertos gengivais livres de tecido conjuntivo (EGLC) e enxertos gengivais livres de tecido conjuntivo invertidos (EGLCI), em boca dividida: estudo em humanos [dissertação]. Bauru: Universidade de São Paulo; 2020.
Nunes M, et al. Tratamento de mucosite peri-implantar pela técnica de enxerto gengival livre: relato de caso. Odontol Clín Cient. 2021;20(2):94-100.
Ferreira D. Técnicas de manipulação de tecido mole sobre implante dentário: revisão de literatura. Saúde Coletiva. 2021;11(68):7521-7532. doi:10.36489/saudecoletiva.2021v11i68p7521-7532.
Neto O, et al. Enxerto gengival livre subepitelial: relato de caso clínico. Braz J Health Rev. 2022;5(4):13474-13482. doi:10.34119/bjhrv5n4-123.
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2026 Luiz Felipe Smaniotto, Lucas Daflon, João José Cossatis

Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Os autores são detentores dos direitos autorais mediante uma licença CCBY 4.0.



